【關鍵詞】 氟西汀;細胞培養;海馬神經元;大鼠
氟西汀是5-羥色胺（5-HT）再攝取抑制劑之一，是應用較廣的抗抑鬱藥。氟西汀除有抗抑鬱作用外，尚可治療其他中樞神經系統疾病。有研究表明，氟西汀對海馬的神經保護作用是其發揮抗抑鬱效應的機制之 一［1］。關於氟西汀對體外培養的海馬神經元生長的影響未見報道，本研究初步探討了氟西汀對原代培養的海馬神經元生長的影響。
1 材料與方法
1.1 新生大鼠海馬神經元的分離和培養
技術方法在參考文獻［2］基礎上加以改進。取出生24 h內的新生SD大鼠（東南大學醫學院動物實驗中心提供），無菌分離出雙側海馬，用顯微剪剪碎，D-Hank's液清洗2或3次，將剪碎的海馬組織轉移至離 心管中，加入等量0.25%的胰酶（美國Sigma公司），37 ℃消化30 min，中間振搖1或2次，加入10%的 DMEM/F12（美國Gibco公司）5 ml，輕輕吹打15次，然後1 000 r · min-1離心5 min，製成單細胞懸液，置於CO2 培養箱（德國Heraeus公司產品）中，差速貼壁30min，去除成纖維細胞，吸取未貼壁的細胞，並用200目 的不鏽鋼濾網過濾，收集過濾後的單細胞懸液於培養皿中，然後至離心管中，取一滴單細胞懸液進行計數，並用DMEM/F12將細胞密度調到1×106ml-1，然後接種於200 μg·ml-1多聚賴氨酸（美國Sigma公司）包被的6孔培養板中，轉移至培養箱內培養，4 h後換爲 無血清培養基，即含2% B27的Neurobasl培養基（美國Gibco公司），以後每3天半量換液1次。使用培養 6 d的神經元進行染色鑑定。
1.2 大鼠海馬神經元的鑑定
1.2.1 烯醇化酶（NSE）免疫細胞化學染色
取培養6 d 6孔培養板中的蓋玻片進行神經元特異的NSE免 疫組織化學染色。棄去培養液，4%多聚甲醛室溫固定1 h ，加入 0.3% H2O2甲醇去除內源性過氧化氫酶，0.1% TritonX-100破膜，10%綿羊血清封閉，加入一抗1∶200 兔抗鼠 NSE抗體，4 ℃溼盒過夜，0.01 mmol ·L-1PBS清洗，加入二抗1∶200生物素化的山羊抗兔IgG，放入 37 ℃溫箱孵育 60 min;0.01 mmol · L-1 PBS 清洗，滴加SABC過氧化物酶複合物，37 ℃溫箱中孵育 60 min，0.01 mmol · L-1PBS清洗，滴加 DAB顯色液作用3～10 min，自來水沖洗後，常規脫水，透明封片。光鏡下觀察NSE表達陽性細胞。
1.2.2 尼氏染色
6孔培養板的細胞培養7d時，取出蓋玻片進行尼氏染色。棄去培養液，0.01 mmol · L-1PBS清洗，4%多聚甲醛室溫固定1 h，0.01 mmol · L-1PBS清洗 3次，氯仿中1 min，95%、70%乙醇各1 min， 蒸餾水清洗，置於1%甲苯胺藍染液中染色20 min，95%乙醇分化，在顯微鏡下觀察控制，時間以尼氏體顯示清晰爲準，37 ℃乾燥，二甲苯透明，中性樹脂封片，光學顯微鏡下觀察。
1.3 實驗分組
在培養的第3天加入氟西汀（常州第四製藥廠生產），根據藥物濃度不同，將實驗細胞分爲5組，分別加 入1、10、20、40 μmol · L-1氟西汀;正常對照組加入等體 積的`培養基。
1.4 海馬細胞形態定量分析
倒置相差顯微鏡（德國Zeiss公司產品）下觀察加 藥48 h後的海馬神經元形態，每組各孔隨機選擇20個視野（每個視野0.17 mm2），記錄每個視野內細胞長出突起的神經元數目，目鏡測微尺隨機測量15個神經元突起的長度和胞體的長徑。
1.5 統計學處理
應用SPSS12.0軟件進行統計分析，各項檢測結果以x-±s 表示。多組比較及組間兩兩比較採用方差分析。
2 結 果
2.1 海馬神經元形態學觀察
倒置相差顯微鏡下觀察，培養1 d，細胞絕大部分貼壁，細胞形態大小不一，以單突起的小細胞爲主。培 養6 d，神經元胞體較大，突起進一步增多、延長，並形成稀疏的網絡（圖1）。培養12 d，神經元胞體進一步增 大，突起形成比較稠密的網絡。培養24 d，神經元胞體出現空泡，部分神經元死亡，胞體崩解，突觸斷裂。